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SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒
簡(jiǎn)要描述:

SYTO 9/PI活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒是一款方便且操作簡(jiǎn)單的試劑盒,利用SYTO 9綠色核酸染料和碘化丙啶(PI)紅色熒光核酸染料來(lái)進(jìn)行細(xì)菌活力的檢測(cè)全面展示,適用于大量的細(xì)菌種屬力度,包括蠟樣芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌國際要求、產(chǎn)氣莢膜桿菌拓展應用、大腸桿菌、肺炎克雷伯氏菌實事求是、草分枝桿菌、綠膿桿菌行動力、Staphylococcus aureus結構、奧拉尼堡沙門氏菌、宋內(nèi)志賀氏菌等落到實處。

  • 產(chǎn)品型號(hào):
  • 參考價(jià)格:
  • 更新時(shí)間:2025-06-04
  • 訪  問(wèn)  量:2008

詳細(xì)介紹

SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒產(chǎn)品簡(jiǎn)介:

SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒是一款方便且操作簡(jiǎn)單的試劑盒保供,利用SYTO 9綠色核酸染料和碘化丙啶(PI)紅色熒光核酸染料來(lái)進(jìn)行細(xì)菌活力的檢測(cè)能力建設,適用于大量的細(xì)菌種屬知識和技能,包括蠟樣芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌醒悟、產(chǎn)氣莢膜桿菌進行部署、大腸桿菌、肺炎克雷伯氏菌新模式、草分枝桿菌重要作用、綠膿桿菌、Staphylococcus aureus應用情況、奧拉尼堡沙門氏菌很重要、宋內(nèi)志賀氏菌和化膿性鏈球菌。

SYTO 9活細(xì)菌/死細(xì)菌雙染試劑盒的工作原理在于:SYTO 9和PI的光譜特征以及穿透健康細(xì)菌細(xì)胞的能力不同也逐步提升。單獨(dú)使用時(shí)保護好,SYTO 9能對(duì)群體內(nèi)的所有細(xì)菌進(jìn)行標(biāo)記—具有完整膜和受損膜的細(xì)菌;相反講理論,PI只能滲透進(jìn)入受損的膜有望,PI的插入會(huì)引起SYTO 9染色熒光的降低,當(dāng)體系內(nèi)加入兩種染料時(shí)解決問題。因此服務效率,通過(guò)適量比例的SYTO 9和PI的混合染色,具有完整膜結(jié)構(gòu)的細(xì)菌呈綠色熒光導向作用,而具受損膜結(jié)構(gòu)的細(xì)菌呈紅色熒光逐步改善。兩者染料的最大激發(fā)和發(fā)射波長(zhǎng)分別是480/500nm(SYTO 9)和 490/635nm(PI)。背景基本無(wú)熒光。本試劑盒兼容于熒光顯微鏡落實落細,熒光光度計(jì)、熒光酶標(biāo)儀組成部分、流式細(xì)胞儀或其它熒光檢測(cè)儀器深入闡釋。

產(chǎn)品組成

編號(hào)/組分 SP4001-40T 規(guī)格 保存方法
SP4001-A SYTO 9 Solution (3.34mM) 60μl -20ºC避光
SP4001-B PI Solution(20mM) 60μl -20ºC避光
SP4001-C Mounting oil, for bacteria immobilized on membranes 2ml -20ºC保存

 

【注】組分C熒光顯微鏡檢測(cè)方法中才會(huì)應(yīng)用的到,具體用法見(jiàn)注意事項(xiàng)3)高效化。

試劑盒規(guī)格說(shuō)明(按照建議的試劑稀釋倍數(shù)和單次測(cè)試體積來(lái)計(jì)算):保存與運(yùn)輸方法:-20℃避光保存大大提高,有效期一年。 冰袋運(yùn)輸完成的事情。

熒光顯微鏡檢測(cè):1ml菌液加入3μl染料混合液(SYTO 1.5μl +PI 1.5μl)調整推進,可做40次獨(dú)立測(cè)試。

熒光酶標(biāo)儀檢測(cè):2ml無(wú)菌水加入12μl染料混合液(SYTO 6.0μl +PI 6.0μl)研究成果,制備成2×工作液發展契機。按照100μl染料混合液加入100μl菌液的比例使用,可做200次獨(dú)立測(cè)試機製性梗阻。

流式細(xì)胞儀檢測(cè):2ml菌液加入6μl染料混合液(SYTO 3.0μl +PI 3.0μl)齊全,可做20次獨(dú)立測(cè)試廣泛關註。

使用方法(以下步驟僅用作示例以指導(dǎo)科研人員開(kāi)展自身細(xì)菌樣本的染色。)

一建強保護、培養(yǎng)條件和細(xì)菌懸液的制備:

【注意】:用本試劑盒進(jìn)行細(xì)菌染色服務好,務(wù)必要小心去除培養(yǎng)基殘留,因?yàn)榱鲃有?,核酸和其它培養(yǎng)基成分可能以不可預(yù)料的方式與SYTO 9和PI結(jié)合效高化,導(dǎo)致染色結(jié)果發(fā)生不可接受的變動(dòng)。簡(jiǎn)單的一次清洗步驟通常足以去除培養(yǎng)基內(nèi)含的培養(yǎng)基成分干擾物殘留反應能力。不建議使用磷酸鹽清洗緩沖液部署安排,因此可能降低染色效率。

1.1 用營(yíng)養(yǎng)肉湯培養(yǎng)大腸桿菌或Staphylococcus aureus(30ml)使其生長(zhǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)后期投入力度。

1.2 于10000×g離心10-15min效果,濃縮25ml細(xì)菌培養(yǎng)物。

1.3 吸走上清液技術,用2ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液來(lái)重懸沉淀改善。

1.4 取1ml重懸菌液分別加入含20ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液的30-40ml離心管(設(shè)置為活細(xì)菌組),用含20ml 70%異丙醇(也可以用其他方法比如高熱處理殺死細(xì)菌)的30-40ml離心管(設(shè)置為死細(xì)菌組)最新。

1.5 兩管樣品(分別為活細(xì)菌組和死細(xì)菌組)于室溫孵育1h發揮重要作用,每隔15min顛倒混勻一次。

1.6 兩管樣品(分別為活細(xì)菌組和死細(xì)菌組)于10000×g離心10-15min模樣。

1.7 用20ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液重懸沉淀取得顯著成效,并且按照步驟1.6再離心一次。

1.8 分別用10ml 0.85% NaCl或適當(dāng)緩沖液重懸兩管樣品數據顯示。

1.9 分別取3ml菌液測(cè)定670nm的光密度(OD670)責任,用玻璃或丙烯酸酯比色皿(1cm路徑)。

1.10 對(duì)于大腸桿菌或Staphylococcus aureus的建議染色濃度實現,根據(jù)你的儀器類型(熒光顯微鏡持續向好、熒光光度經(jīng)、熒光酶標(biāo)儀)或流式細(xì)胞儀來(lái)參考相應(yīng)部分的染色條件。

二估算、染色條件的優(yōu)化:

試劑盒內(nèi)的兩種染料都經(jīng)過(guò)平衡優(yōu)化,按照1:1的比例進(jìn)行混合用于絕大多數(shù)的樣本都能得到良好的區(qū)分活/死細(xì)菌達到。偶然情況下,兩種染料的混合比例需根據(jù)實(shí)際需求進(jìn)行優(yōu)化調(diào)整大型。比如:在待檢樣本中的可能性,綠色熒光太突出,建議要么降低SYTO 9濃度不可缺少,要么提高PI濃度系列。

為了全面優(yōu)化染色條件明確相關要求,建議測(cè)試梯度濃度的SYTO 9,每一種濃度與梯度濃度的PI進(jìn)行組合染色方案。建議按照1ml細(xì)菌懸液加入3µl不同混合比率的染料預(yù)混液去突破。

[注]:SYTO 9 +PI 對(duì)細(xì)菌的染色請(qǐng)按照說(shuō)明書(shū)建議的15min來(lái)操作規模最大,不要超過(guò)30min。 SYTO 9有很好的細(xì)菌滲透性,我們給的實(shí)驗(yàn)條件都是優(yōu)化過(guò)提供深度撮合服務。 SYTO 9只有在哺乳動(dòng)物細(xì)胞染色,可能會(huì)延長(zhǎng)染色時(shí)間到120min預期。

由于染的是活菌+死菌的比例建設項目,請(qǐng)染色后盡快觀察,不要超過(guò)1h左右。 另又進了一步,染色后基本是不用清洗的,除非覺(jué)得背景熒光很高物聯與互聯,就是非細(xì)菌的菌體部分都能看到熒光狀況,才有必要簡(jiǎn)單清洗一次。

三取得了一定進展、熒光顯微鏡操作步驟:

活菌和死菌的熒光可能用標(biāo)準(zhǔn)的熒光素長(zhǎng)通濾片設(shè)置來(lái)同時(shí)觀察業務。替代方案的話,活菌(綠色熒光)和死菌(紅色熒光)可分別用熒光素和Texas Red帶通濾光片設(shè)置認為。用于本試劑盒檢測(cè)的建議熒光顯微鏡濾片設(shè)置見(jiàn)表1運行好。

表1 適用于本試劑盒檢測(cè)用的常見(jiàn)濾光片特征:

Omega濾光片*

Chroma濾光片*

注意事項(xiàng)

XF25, XF26, XF115

11001, 41012, 71010

用于同時(shí)觀察SYTO 9和PI染色的長(zhǎng)通和雙發(fā)射濾光片

XF22, XF23

31001, 41001

僅用于觀察SYTO 9的帶通濾光片

XF32, XF43, XF102, XF108

31002, 31004, 41002, 4100

僅用于觀察PI的帶通濾光片

用于熒光顯微鏡觀察的推薦帶通濾光片。Omega濾光片由Omega Optical提供紮實,Chroma濾光片由Chroma Technolog公司提供同期。

3.1 在微量離心管內(nèi)組合等量的組分A(SYTO 9)和組分B(PI),混勻可能性更大。

3.2 每1ml細(xì)菌懸液內(nèi)加入3μl染料預(yù)混液鍛造。按照建議的稀釋倍數(shù),最終得到的染色工作液內(nèi)含0.3% DMSO使命責任。更高濃度的DMSO可能對(duì)染色產(chǎn)生副效果共謀發展。

3.3 混勻后室溫避光孵育15min。

3.4 吸5μl染色的細(xì)菌懸液到載玻片上持續創新,并蓋上18mm方形蓋玻片創造。

3.5 根據(jù)表1選擇熒光顯微鏡上合適的濾片來(lái)觀察。

四分析、熒光光度計(jì)操作步驟:

4.1 調(diào)整大腸桿菌懸液(活和殺死)使其密度為1×108個(gè)細(xì)菌/ml(~0.03 OD670)或Staphylococcus aureus懸液(活和殺死)使其密度為1×107個(gè)細(xì)菌/ml(~0.15 OD670)。用于熒光光度計(jì)檢測(cè),Staphylococcus aureus懸液的濃度通常比大腸桿菌少10倍。

4.2 參考表2在1cm 玻璃聽得懂、丙烯酸酯或石英熒光比色皿混勻五種不同比例的細(xì)菌懸液推動。每個(gè)樣本的總體積為3ml。

4.3 在微量離心管內(nèi)分別加30μl組分A(SYTO 9)和30μl組分B(PI)設備製造,混勻有效性。

4.4 每組不同比例的細(xì)菌懸液內(nèi)加入9μl染料預(yù)混液(5個(gè)樣本×9μl =45μl總量),用槍上下吹打數(shù)次使其混勻資源配置。

4.5 室溫避光孵育15min形勢。

4.6 熒光測(cè)定和數(shù)據(jù)分析:

①用熒光光度計(jì)測(cè)定每組細(xì)菌懸液(Fcell)的熒光發(fā)射光譜(激發(fā):470nm,發(fā)射:490-700nm)

②分別測(cè)定發(fā)射光譜在510-540nm(em1高端化,綠色)和620-650nm(em2能運用,紅色)的累積熒光,并計(jì)算累積熒光比值:RatioG/R=Fcell,em1/Fcell,em2

③以大腸桿菌懸液內(nèi)活細(xì)胞的占比為橫坐標(biāo)參與水平,以累積綠色熒光與紅色熒光比(RatioG/R)為縱坐標(biāo)講理論,制圖

五、熒光酶標(biāo)儀操作步驟:

針對(duì)細(xì)菌懸液智能設備,用熒光酶標(biāo)儀的測(cè)定條件與熒光光度計(jì)的基本類似解決問題。如同熒光光度計(jì)的檢測(cè)步驟,染料濃度相同于熒光顯微鏡的建議濃度不要畏懼,綠/紅熒光比與活細(xì)菌相對(duì)數(shù)量呈正比導向作用。

5.1 調(diào)整大腸桿菌懸液(活和殺死)使其密度為2×108個(gè)細(xì)菌/ml(~0.06 OD670)或Staphylococcus aureus懸液(活和殺死)使其密度為2×107個(gè)細(xì)菌/ml(~0.3 OD670)。用于熒光酶標(biāo)儀檢測(cè)作用,Staphylococcus aureus懸液的濃度通常比大腸桿菌少10倍重要意義。

5.2 參考表3在16×125mm高硼硅玻璃培養(yǎng)管內(nèi)混勻五種不同比例的細(xì)菌懸液(大腸桿菌或Staphylococcus aureus)。每個(gè)樣本的總體積為2ml應用的選擇。

5.3 在微量離心管內(nèi)分別加6μl組分A(SYTO 9)和6μl組分B(PI)效率,混勻。

5.4 通過(guò)將所有的12μl上述預(yù)混液加入2ml無(wú)菌的dH2O逐漸顯現,混勻后制備2×染色混合液十大行動。

5.5 吸100μl細(xì)菌懸液混合物到平底96孔板的各孔內(nèi),建議每個(gè)制備物做三個(gè)平行著力增加。96孔板的邊緣孔通丑w系?罩靡员苊饧僮x數(shù)。

5.6 更換新的槍頭背景下,每孔加入100μl 2×染色混合液多種場景,上下吹打使充分混勻。

5.7 室溫避光孵育15min開展試點。

5.8 熒光測(cè)定和數(shù)據(jù)分析:

①以~485nm為激發(fā)波長(zhǎng)先進技術,~530nm為發(fā)射波長(zhǎng)(emission 1傳承,綠色)來(lái)測(cè)定每孔熒光

②以~485nm為激發(fā)波長(zhǎng),~630nm為發(fā)射波長(zhǎng)(emission 2合作,紅色)來(lái)測(cè)定每孔熒光

③通過(guò)測(cè)定兩種發(fā)射波長(zhǎng)下的熒光強(qiáng)光,并計(jì)算熒光比值:RatioG/R=Fcell,em1/Fcell,em2

④以大腸桿菌懸液內(nèi)活細(xì)胞的占比為橫坐標(biāo)前景,以RatioG/R為縱坐標(biāo),制圖

六、流式細(xì)胞儀操作步驟:

儀器的檢測(cè)配置可能要因?qū)嶋H情況來(lái)調(diào)整效高化,但此處列出的檢測(cè)技術(shù)和設(shè)置參數(shù)適用于市場(chǎng)上絕大多數(shù)流式細(xì)胞儀生產效率。

6.1 調(diào)整大腸桿菌懸液(活和殺死)使其密度為1×108個(gè)細(xì)菌/ml(~0.03 OD670),之后用無(wú)菌dH2O稀釋100倍使其最終密度為1×106個(gè)細(xì)菌/ml部署安排。

6.2 參考表4在16×125mm高硼硅玻璃培養(yǎng)管內(nèi)混11種不同比例的細(xì)菌懸液競爭激烈。每個(gè)樣本的總體積為2ml。

注意事項(xiàng):

1由于試劑盒內(nèi)SYTO 9和PI的組分量少效果,室溫回溫充分融化后學習,務(wù)必低速離心沉至管底后再開(kāi)蓋。

2兩款探針溶液本身就是溶于DMSO中改善,所以后續(xù)無(wú)需再單獨(dú)添加,第一次使用可將SYTO 9和PI根據(jù)單次用量分裝保存,密封后置于≤-20℃避光保存推廣開來。

3組分C(Mounting oil)主要應(yīng)用于熒光顯微鏡檢測(cè)法空白區,菌液加到載玻片后,接著滴1-2滴組分C用于將細(xì)菌固定在膜上,25℃的折射率是517 ± 0.003密度增加。不要用作浸油(Immersion oil)應用優勢。

4SYTO 9和PI結(jié)合核酸,PI是潛在的誘變劑信息化,目前沒(méi)有數(shù)據(jù)闡明SYTO 9的誘變性或毒性發展需要,兩種試劑使用都需做恰當(dāng)防護(hù)。DMSO能促進(jìn)有機(jī)分子進(jìn)入組織便利性。強(qiáng)烈建議處理DMSO儲(chǔ)存液時(shí)戴雙層手套開展研究。對(duì)于核酸染料,含此類染料的試劑經(jīng)活性炭吸附后再進(jìn)行廢液處理信息化×α?;钚蕴恐蠼?jīng)焚燒來(lái)破壞染料。

5為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作方式之一。

 

 

 

 

 

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